В эксперименте использовали клетки
Данные получены на клетках DU148 при облучении дозами 0, 2, 4, 6 Гр.
Данные МТТ теста на выживаемость (время инкубации 60 минут, доза боркаптата 80ppm) представлены на Рисунке 2.1.
Figure 2.1: МТТ тест облучение протонами клеток линии Du145 (время инкубации 60 минут, доза боркаптата 80ppm)
Данные МТТ теста на выживаемость (время инкубации 120 минут, доза боркаптата 80ppm) представлены на Рисунке 2.2.
Figure 2.2: МТТ тест облучение протонами клеток линии Du145 (время инкубации 120 минут, доза боркаптата 80ppm)
Данные МТТ теста на выживаемость (время инкубации 60 минут, доза боркаптата 160ppm) представлены на Рисунке 2.3.
Figure 2.3: МТТ тест облучение протонами клеток линии Du145 (время инкубации 60 минут, доза боркаптата 160ppm)
Данные МТТ теста на выживаемость (время инкубации 120 минут, доза боркаптата 160ppm) представлены на Рисунке 2.4.
Figure 2.4: МТТ тест облучение протонами клеток линии Du145 (время инкубации 120 минут, доза боркаптата 160ppm)
Данные МТТ теста на выживаемость (время инкубации 60 минут, доза боркаптата 250ppm) представлены на Рисунке 2.5.
Figure 2.5: МТТ тест облучение протонами клеток линии Du145 (время инкубации 60 минут, доза боркаптата 250ppm)
Данные МТТ теста на выживаемость (время инкубации 120 минут, доза боркаптата 250ppm) представлены на Рисунке 2.6.
Figure 2.6: МТТ тест облучение протонами клеток линии Du145 (время инкубации 120 минут, доза боркаптата 250ppm)
Анализ роста колоний проводился в программном пакете ImageJ, полученные кривые представлены на Рисунке 2.7.
Figure 2.7: Оценка величины клеточных колоний на фоне облучения протонами клеток линии Du145
В эксперименте использовались самки мышей линии balb-c в возрасте 3-6 месяцев, масса животных на момент начала эксперимента составляла 20.5±2 грамма. Для моделирования опухолевого процесса использовались клетки линии СТ26 (аденокарцинома толстой кишки) вводимые подкожно в количестве \(1.2х10^6\) на животное. В эксперименте были сформированы следующие группы:
1. Контроль 1 – перевивка в левую лапу \(6х10^5\) СТ26 облученные протонами 200 МэВ 30 Гр; - 6 самок.
2. Эксперимент – перевивка в правую лапу \(6х10^5\) СТ26 облученные протонами 200 МэВ 30 Гр, спустя 5 суток – перевивка в правое бедро \(1.2х10^6\) СТ26; - 9 самок.
3. Контроль 2 – перевивка в правую лапу \(4х10^5\) А172 облученные протонами 200 МэВ 30 Гр, спустя 5 суток – перевивка в правое бедро \(1.2х10^6\) СТ26; - 6 самок.
4. Контроль 3 – спустя 5 суток – перевивка в правое бедро \(1.2х10^6\) СТ26; - 6 самок.
В процессе наблюдения за животными после введения клеток, облученных в летальной дозе, и/или после перевивки клеток для формирования опухолевого узла (на правом бедре) проводится ежедневный осмотр животных, регистрируется масса животного, наличие и размер опухолевого узла.
У всех животных после выведения из эксперимента, а также у животных павших в период наблюдений, проводится взятие гистологического материала для проведения дальнейших исследований (что имеет смысл взять на анализ).
Данные по динамике размера опухолевого узла представлены на Рисунке 4.1.
Figure 4.1: Динамика роста опухолевого узла в котнрольных и экспериментальной группах при перевивке опухоли на фоне введения облучённых клеток СТ26 и а172 (доза 30 Гр)
Figure 4.2: Динамика роста опухолевого узла в котнрольных и экспериментальной группах при перевивке опухоли на фоне введения облучённых клеток СТ26 и а172 (доза 30 Гр)
Данные по выживаемости в исследованных группах и анализ рисков (Hazard ratio) представлены на Рисунке 4.3 и Рисунке 4.4, соответсвенно.
Figure 4.3: Кривая выживаемости групп в эксперименте (график Каплана-Мейера).
Figure 4.4: График отношения риска (Hazard ratio) для экспериментальных и контрольных групп.