El Poli-3-hidroxibutirato (PHB) es un bioplástico biodegradable acumulado intracelularmente por bacterias como Cupriavidus necator bajo condiciones de estrés nutricional. Su síntesis ocurre en dos etapas metabólicamente distintas, lo que justifica dos reactores batch en serie. El caldo de cultivo entra a 30 °C en ambos reactores, coincidiendo con la temperatura óptima de operación.
La glucosa se metaboliza para maximizar la producción de biomasa activa. Una fracción menor se dirige al PHB asociado al crecimiento.
| Volumen | 165 m³ |
| Duración del batch | 15 h |
| [Glucosa]₀ | 20 g/L |
| [Biomasa]₀ | 0.1 g/L (inóculo) |
| T entrada caldo | 30 °C |
| T operación | 30 °C |
Con biomasa establecida y limitación de nitrógeno, la glucosa se canaliza hacia la síntesis y acumulación del polímero intracelular PHB.
| Volumen | 152 m³ |
| Duración del batch | 21 h |
| [Glucosa]₀ | 12 g/L |
| [Biomasa]₀ | 2.5 g/L (inoculada) |
| T entrada caldo | 30 °C |
| T operación | 30 °C |
En un reactor batch no hay flujo de entrada ni salida durante la operación. El sustrato se carga al inicio y la concentración de biomasa y producto evoluciona con el tiempo según la cinética metabólica. El balance de materia se formula como ecuación diferencial ordinaria (EDO) en función del tiempo.
La biomasa microbiana se representa por su fórmula empírica por átomo de carbono: CH₁.₇₄O₀.₄₆N₀.₁₉. La reacción global balanceada es:
En condiciones de limitación nutricional, el acetil-CoA excedente se polimeriza en PHB. La reacción neta es:
La demanda de oxígeno en la Ec. 2 (1.46 mol O₂/mol glucosa) es menor que en la Ec. 1 (2.77 mol O₂/mol glucosa), reflejando la menor oxidación del carbono al incorporarse en el polímero.
Ambas ecuaciones satisfacen la conservación de C, H, O y N. Los coeficientes fueron tomados de la literatura experimental de fermentación de Cupriavidus necator y validados con ajustes cinéticos de R² > 0.90.
| Ecuación | Reactivo | Productos principales | mol O₂/mol glucosa | Descripción |
|---|---|---|---|---|
| Ec. 1 | C₆H₁₂O₆ + 2.77 O₂ | Biomasa + PHB + H₂O | 2.77 | Crecimiento celular |
| Ec. 2 | C₆H₁₂O₆ + 1.46 O₂ | CO₂ + PHB + H₂O | 1.46 | Síntesis de PHB |
El modelo de Richards es una generalización del modelo logístico que permite representar curvas de crecimiento sigmoides con asimetría variable. El sistema de EDOs es:
El término α·(dX/dt) representa la formación de PHB asociada al crecimiento, mientras que kₚ·X es la formación no asociada (producción basal). Las EDOs se integran numéricamente con el método de Euler, Δt = 0.01 h.
| Parámetro | Símbolo | Valor | Unidades |
|---|---|---|---|
| Tasa máx. de crecimiento | μ_max | 0.1385 | h⁻¹ |
| Biomasa máx. sostenible | X_max | 2.4887 | g/L |
| Parámetro de forma (Richards) | v | 5.6332 | adimensional |
| Coef. PHB asociado al crecimiento | α | 0.2542 | g PHB / g X |
| Coef. PHB no asociado al crecimiento | kₚ | 0.0340 | g PHB / (g X · h) |
| Rendimiento biomasa/sustrato | Yₓ/ | 0.52 | g X / g S |
| Rendimiento PHB/sustrato (R1) | Yₚ/ | 0.30 | g PHB / g S |
En el segundo reactor la biomasa permanece constante (dX/dt ≈ 0). La velocidad de consumo de sustrato está inhibida a medida que el contenido intracelular de PHB aumenta:
| Parámetro | Símbolo | Valor | Unidades |
|---|---|---|---|
| Tasa específica máx. de consumo de S | q | 0.370 | g S / (g X · h) |
| Constante de saturación (Monod) | K | 0.880 | g/L |
| Rendimiento PHB/sustrato (R2) | Yₚ/ | 0.482 | g PHB / g S |
| Fracción máx. de PHB en biomasa | fₚₛₛ,max | 9.0 | g PHB / g X |
| Exponente de inhibición | β | 1.7 | adimensional |
En un reactor batch no hay corrientes de entrada ni salida. El balance diferencial es: d(C₀·V)/dt = r₀·V. A volumen constante: dC₀/dt = r₀. La integración del sistema de EDOs da la evolución temporal de todas las concentraciones.
1. Integración de las EDOs cinéticas hasta el tiempo final del batch (t = 15 h para R1, t = 21 h para R2).
2. Consumos y producciones totales por diferencia de estados finales e iniciales.
3. O₂, CO₂ y H₂O mediante coeficientes estequiométricos, convirtiendo primero la masa de glucosa a moles.
| Variable | Reactor 1 — Crecimiento | Reactor 2 — PHB |
|---|---|---|
| Glucosa inicial (g/L) | 20 | 12 |
| Glucosa final (g/L) | 17.498 | 0.008 |
| Glucosa consumida (kg/batch) | 412.8 | 1822.8 |
| Biomasa inicial (g/L) | 0.1 | 2.5 |
| Biomasa final (g/L) | 0.7971 | 2.5 |
| Biomasa producida (kg/batch) | 115 | 0 (constante) |
| PHB final (g/L) | 0.3484 | 5.7801 |
| PHB producido (kg/batch) | 57.5 | 878.6 |
| O2 consumido (kg/batch) | 203.1 | 472.7 |
| CO2 producido (kg/batch) | — | 877.2 |
| H2O producida (kg/batch) | 158.1 | 541.3 |
El calor de reacción se determina mediante la Ley de Hess, aplicando las entalpías estándar de formación de todos los compuestos participantes:
| Compuesto | Fórmula | ΔH°ṥ (kJ/mol) | Fuente |
|---|---|---|---|
| Glucosa | C₆H₁₂O₆ | -1274.4 | NIST WebBook |
| Oxígeno molecular | O₂(g) | 0.0 | Referencia |
| Biomasa microbiana | CH₁.₇₄O₀.₄₆N₀.₁₉ | -91.2 | Battley, 1998 |
| PHB monómero | C₄H₆O₂ | -397.5 | Literatura bioquímica |
| Agua líquida | H₂O(l) | -285.83 | NIST WebBook |
| Dióxido de carbono | CO₂(g) | -393.51 | NIST WebBook |
La entalpía de formación de la biomasa se estima a partir de la entalpía de combustión promedio (~22 kJ/g de biomasa seca), ajustada a la fórmula empírica CH1.74O0.46N0.19. Este es el enfoque estándar en ingeniería de bioprocesos (Battley, 1998; Atkinson & Mavituna, 1991).
La chaqueta funciona como intercambiador entre el caldo (a 30 °C constante) y el agua de servicio. La ecuación de diseño es:
Para flujo en contracorriente la diferencia de temperatura logarítmica media es:
El coeficiente global se calcula como suma de resistencias térmicas en serie: 1/U = 1/hₒ + e/k + 1/hₒ. El valor adoptado conservadoramente es U = 800 W/(m²·K).
Para biorreactores cilíndricos con H/D = 1.5, el área de chaqueta disponible es el 85% de la superficie lateral.
| Volumen | 165 m³ |
| Diámetro D₁ | 5.193 m |
| Altura H₁ | 7.79 m |
| Área chaqueta disponible | 108.03 m² |
| Área chaqueta requerida | 96.11 m² |
| Estado | ✓ SUFICIENTE |
| Volumen | 152 m³ |
| Diámetro D₂ | 5.053 m |
| Altura H₂ | 7.58 m |
| Área chaqueta disponible | 102.27 m² |
| Área chaqueta requerida | 125.43 m² |
| Estado | ⚠ INSUFICIENTE |
El caldo entra a 30 °C. La chaqueta mantiene el sistema en ese setpoint removiendo el calor metabólico y mecánico continuamente:
En este análisis se evalúa qué ocurriría si los biorreactores operaran sin ningún sistema de intercambio de calor. Todo el calor generado por las reacciones biológicas y la agitación mecánica se acumula en el caldo, elevando su temperatura. El caldo entra a 30 °C en ambos reactores.
Sin intercambio de calor con el entorno, el balance de energía se reduce a la acumulación total:
| Parámetro | Reactor 1 — Crecimiento | Reactor 2 — PHB |
|---|---|---|
| T entrada del caldo (°C) | 30 | 30 |
| Masa de caldo (kg) | 165,000 | 152,000 |
| Cp caldo (J/kg·K) | 4000 | 4000 |
| Calor de reacción total (kJ/batch) | 228,980 | 7,600,269 |
| Calor de agitación total (kJ/batch) | 13,365,000 | 17,236,800 |
| Calor total acumulado (kJ/batch) | 13,593,980 | 24,837,069 |
| DeltaT adiabático analítico (°C) | 20.6 | 40.85 |
| T máxima adiabática analítica (°C) | 50.6 | 70.85 |
| T máxima adiabática simulada (°C) | 50.6 | 70.85 |
| Supera temperatura letal 40 °C? | SI — PROCESO INVIABLE | SI — PROCESO INVIABLE |
| Tiempo para alcanzar 40 °C (h) | 7.35 | 4.49 |
Sin sistema de enfriamiento, ambos reactores acumularían calor hasta superar los límites letales para Cupriavidus necator (~40 °C). La desnaturalización enzimática a esas temperaturas hace el proceso completamente inviable. El sistema de chaqueta no es opcional, es un requerimiento crítico de proceso.
Incluso antes de alcanzar la temperatura letal, el aumento de temperatura modifica la cinética: reduce la afinidad enzimática, altera el metabolismo de acumulación de PHB y puede inducir respuestas de estrés térmico que desvían el carbono hacia productos no deseados.
La chaqueta diseñada (U = 800 W/m²·K, agua 15-25 °C) mantiene la temperatura del caldo en 30 °C durante todo el batch. El escenario adiabático muestra que la temperatura se dispararía muy por encima de los límites biológicos en pocas horas. Esta comparación cuantifica el valor crítico del sistema de integración térmica.
| Parámetro | Reactor 1 — Crecimiento | Reactor 2 — PHB |
|---|---|---|
| CONFIGURACION | — | — |
| Volumen reactor (m3) | 165 | 152 |
| Duracion batch (h) | 15 | 21 |
| Glucosa0 (g/L) | 20 | 12 |
| Biomasa0 (g/L) | 0.1 | 2.5 |
| T entrada caldo (C) | 30 | 30 |
| BALANCE DE MATERIA | — | — |
| Glucosa consumida (g/L) | 2.502 | 11.992 |
| Biomasa final (g/L) | 0.7971 | 2.5 |
| PHB producido (g/L) | 0.3484 | 5.7801 |
| O2 consumido (kg/batch) | 203.1 | 472.7 |
| CO2 producido (kg/batch) | — | 877.2 |
| H2O producida (kg/batch) | 158.1 | 541.3 |
| Masa PHB total (kg/batch) | 57.5 | 878.6 |
| BALANCE DE ENERGIA | — | — |
| DH rxn (kJ/mol glucosa) | -99.94 | -751.2 |
| Calor rxn (kJ/batch) | 228,980 | 7,600,269 |
| Potencia media rxn (kW) | 4.24 | 100.53 |
| Potencia agitacion (kW) | 247.5 | 228 |
| POTENCIA TOTAL A REMOVER (kW) | 251.74 | 328.53 |
| CHAQUETA DE ENFRIAMIENTO | — | — |
| Diametro reactor (m) | 5.193 | 5.053 |
| Altura reactor (m) | 7.79 | 7.58 |
| LMTD (C) | 3.274 | 3.274 |
| U global (W/m2·K) | 800 | 800 |
| Area chaqueta disponible (m2) | 108.03 | 102.27 |
| Area chaqueta requerida (m2) | 96.11 | 125.43 |
| FLUJO AGUA kg/s | 20.0462 | 26.1612 |
| FLUJO AGUA m3/h | 72.1664 | 94.1804 |
| ANALISIS ADIABATICO | — | — |
| T maxima sin enfriamiento (C) | 50.6 | 70.9 |
| DeltaT adiabatico (C) | 20.6 | 40.9 |
| Supera T letal 40 C? | SI | SI |
Ambas reacciones consumen glucosa como única fuente de carbono (caldo a 30 °C de entrada). En R1, la glucosa se destina principalmente a biomasa (Y_X/S = 0.52 gX/gS). En R2, la biomasa permanece constante y la glucosa se canaliza hacia PHB con alto rendimiento (Y_P/S = 0.482 gPHB/gS). La demanda de O2 es mayor en crecimiento: 2.77 vs. 1.46 mol O2/mol glucosa.
El análisis adiabático demuestra que sin chaqueta la temperatura del caldo superaría los límites letales para C. necator. La chaqueta diseñada (U = 800 W/m2·K, agua 15-25 °C) es suficiente para mantener los 30 °C de operación con las cargas calculadas.
Instalar control PID sobre la válvula de agua de enfriamiento con sensor en el caldo. Considerar serpentines internos adicionales para los picos de generación de calor al inicio del batch. Verificar la potencia específica de agitación (W/m3) en función de la reología en R2, donde la alta concentración de PHB puede incrementar la viscosidad aparente.